Anfibios

Los anfibios son tetrápodos pulmonados de piel blanda y húmeda cuyos estadíos larvarios son acuáticos y de respiración branquial. Debido a estas características, su abundancia y diversidad es mayor en las regiones tropicales húmedas. Algunas formas, como las ranas y sapos, son muy conocidas y han adquirido mucha importancia. En las escuelas se usan comúnmente en los estudios de anatomía y además, en las universidades, para gran variedad de estudios fisiológicos.

 Muchas especies de anfibio, debido en parte a sus hábitos nocturnos o a sus estaciones sexuales cortas, necesitas estudios taxonómicos y ecológicos detallados.

Los anfibios abundan en las regiones húmedas, sobre todo en las cálidas, aunque muchos pueden vivir en actividad durante cierta época del año en las aguas frías de los arroyos procedentes de las montañas o en las lagunas de lugares fríos. Incluso pueden vivir en hábitats desérticos, refugiándose bajo las piedras o en profundos agujeros y realizando su actividad durante las noches. Muchas de estas especies efectúan migraciones en masa durante la estación de crianza. Durante esta temporada deberá suspenderse la sobrecolecta, pues la población podría reducirse con peligro de extinguirse algunas especies.

La mayor parte de los anfibios se pueden colectar fácilmente en pantanoso charcos de crianza, aunque ciertas especies se deben buscar mediante las técnicas de colecta adecuadas y para ello es importante saber donde y cuando buscar.

Datos de campo. Las características de importancia taxonómica que se deben tomar en cuenta para preservar convenientemente los especímenes, son las siguientes:

a) La longitud total.

b) La longitud del hocico a la cola

c) La longitud de la cola)

 Para ello es preciso que los especímenes estén convenientemente fijados y que el cuerpo y las patas guarden una posición adecuada. También se deben anotar las características de la ornamentación y coloración cuando el ejemplar está todavía vivo y todos los datos de la localidad y ecológicos necesarios.

 En el diario de campo se deben anotar detalladamente las condiciones ecológicas y de colecta. La localidad exacta, condiciones del tiempo, temperatura del agua y del aire, hábitat general, horas de actividad y hora de colecta, registro de voces, actividad sexual, puesta de huevos, alimentación , etc.

Colecta:

Una vez que se ha encontrado una buena área de colecta, por lo general no se requiere de equipo muy especializado, se pueden capturar con cierta facilidad, con la ayuda de una red acuática o un red para dragado, principalmente para atrapar renacuajos y pinzas e incluso las manos para organismos más grandes, pero se recomienda el uso de guantes debido a las toxinas que pueden liberar algunas especies; los especímenes colectados deben depositarse en frascos o bolsas de plástico con agua del medio. No conviene mezclar a las especies de localidades diferentes.

 Los huevos normalmente se encuentran a la orilla de los pantanos y arroyos o en las plantas acuáticas y deben ser transportados en frascos con agua del medio. De esta manera se pueden observar las diferentes fases del desarrollo.

Un método práctico y eficaz para capturar ranas y sapos consiste en buscarlos durante las noches lluviosas con una linterna o lámpara de cabeza, de las que utilizan para las cacerías. De este modo se pueden capturar anfibios nos solo dentro del agua, sino también entre las hierbas de lugares boscosos o en los troncos de los árboles. Se deben llevar para su colecta frascos y bolsas de plástico o sacos a de manta, cuidando de no poner especies distintas en el mismo lugar.

Narcóticos

Se pueden anestesiar o narcotizar a los anfibios con cloretona. Una cucharadita de cloretona en un galón de agua es suficiente para anestesiarlos o incluso matarlos, al igual que la congelación. Diez a quince gotas de aceite de clavo en un litro de agua da buenos resultados, ya que inmoviliza a los ejemplares después de un rato.

Fijación

Una vez muertos, se fijan en formol de 8 al 10% y se almacenan en líquidos adecuados. Los especímenes  grandes se deben inyectar con el fijador, se debe inyectar en la cavidad abdominal y en los músculos de las patas.

Después del fijador, se ponen en preservativo par almacenarse en frascos. Los preservativos más usados son el formol al 5%, el alcohol etílico de 70% y el isopropílico de 40 o 50%. Los especímenes fijados en formol se pueden trasferir directamente a éste; pero los que se van a conservar en alcohol se deben lavar con agua corriente durante veinticuatro horas o más. Después de un día, el alcohol debe cambiarse para asegurar su concentración.

Además de los datos y números registrados en el diario de campo y en el rótulo del frasco, es necesario un marbete pequeño con el número de catálogo amarrado a una de las patas del espécimen. Se recomienda hacer una incisión en la parte ventral del abdomen para asegurar la fijación de las vísceras. Después de esto se recomienda tenerlos en lugares oscuros ya que la luz decolora a los especímenes.

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Peces

Dentro de los estudios hidrobiológicos mas interesantes y que en México comienzan a desarrollarse cada vez en mayor número están los que se relacionan directa o indirectamente con los peces. Van desde su identificación taxonómica y conocimiento anatómico, hasta sus adaptaciones estructurales y ecológicas. Para efectuarlos es necesario conocer las diferentes técnicas para su colecta y observación.

Para que los especímenes colectados presenten su máximo valor, deben estar bien conservados y acompañado de los datos adecuados. Entre las características taxonómicas que deben conservarse están la siguientes: las forma del cuerpo, la forma de la cola, el tipo de escamas, la posición relativa de las diferentes aletas, la exposición o encubrimiento de las branquias, el número de las hendiduras branquiales.

Las medidas más comúnmente utilizadas para identificarlos, determinan la edad o la madurez, para efectuar comparaciones estadísticas, etcétera, y son las siguientes: la longitud total (del hocico a la punta de la cola), la longitud estándar (del hocico al extremos del a columna vertebral), la longitud pre dorsal (del hocico a la primera aleta dorsal), la longitud de la cabeza (del hocico a la parte posterior del opérculo), el diámetro horizontal del ojo, la anchura máxima del cuerpo, etcétera.

•         Colecta

Debido a que la colecta de éstos animales requiere cierta preparación y experiencia, además del equipo generalmente costoso, no insistiremos en los métodos; sólo haremos algunas consideraciones generales.

La colecta se hace, por lo común, con redes de varios tipos y trabajos. La red barredera de tres a siete metros es bastante apropiada. En los lagos o en los arroyos grandes, se pueden usar redes en forma de sacos o bolsas. Las tarrayas, son útiles para pescar en los pantanos abiertos y poco profundos     o en las orillas delos lagos y lagunas.

•       Conservación

Los especímenes se deben matar colocándolos durante unos momentos en una solución de cloretona para que se relajen. Una vez relajados, se ponen en formol al 10% o en alcohol de 70%.  Si los especímenes son grandes, el fijador debe inyectarse a los órganos internos del cuerpo a través de una rajadura en el lado derecho de la cavidad abdominal. Aquellos peces destinados para el estudio de su esqueleto o del contenido estomacal no deben fijarse con formol. 

Los especímenes pequeños o de tamaño regular pueden depositarse en frascos con sus datos individuales. Los rótulos deben atarse a la base de la cola y escribirse con tintas insolubles en fijador. Los especímenes grandes se pueden conservar en alcohol dentro de bolsas de bula﷽﷽﷽﷽﷽﷽ mandente la piel con las espinas de todas las aletas y el crables en fijador.les. Los rdio de su esqueleto o del contplástico gruesas.

•     Técnica escolar para la conservación por taxidermia

1.     Haga una abertura ventral, desde la parte posterior del opérculo hasta el ano.

2.     Levante la piel con un bisturí, desprendiéndola del cuerpo hasta la aleta dorsal.

3.     Saque con pinzas para disección y tijeras, toda la masa muscular y las vísceras del cuerpo, dejando solamente la piel con las espinas de todas las aletas y el cráneo con su mandíbula.

4.     Una vez vaciado, rompa la parte interna del cráneo con unas tijeras grandes y saque la masa encefálica de su interior. Corte la lengua de la cavidad bucal, y de la cavidad branquial desprenda las branquias junto con el arco que las sostiene, dejando sólo el opérculo, finalmente quite los ojos.

5.     Impregne la piel por su parte interna con cualquiera de las siguientes sustancias: Bórax o una mezcla de arsénico-alumbre a partes iguales.

6.     Forme un armazón apropiado, con un alambre o varilla que sustituya la columna vertebral y algodón o viruta para empacado, procurando formar una copia del cuerpo original del pez.

7.     Coloque el cuerpo formado cubriéndolo con la piel, y agréguele un poco de para-diclorobenceno o naftalina para ayudar a su conservación. La varilla de sostén se debe incrustar en la parte anterior del cráneo, y en su parte posterior debe llegar hasta la base de la cola.

8.     Cosa la abertura con hilo de seda del color aproximado al de la piel.

9.     Colóquele al espécimen ojos de plástico o de vidrio.

10.     Para evitar que las aletas se arruguen coloque una  o varias capas de barniz transparente para uñas.

11.     Ponga a secar al espécimen al calor del solo en una parrilla eléctrica.

12.      Una vez seco el ejemplar, móntelo en un dispositivo simple.

 Características generales de los peces

Celenterados

Son un grupo de animales metazoos  de simetría radiada que comprenden los organismos conocidos como: actinias, hidras, corales, medusas, anémonas y pólipos.

Una de las características de la mayoría de estos invertebrados, es la de poseer unas células (nematoblastos / nematocistos) las cuales al ser excitadas, segregan un veneno o sustancia altamente urticante, que muchas veces les permite paralizar a sus agresores o presas.

La mayoría de los celenterados marinos viven cerca de las costas a poca profundidad y frecuentemente sobre sustratos rocosos. Otros se distribuyen a     grandes profundidades.

•        Colecta y fijación de la hidras

Por su pequeño tamaño de 1 o 2 mm es difícil percibir su presencia, debe revisarse cuidadosamente las superficie de las rocas y la vegetación acuática. Las manchas grisáceas o parduzcas sobre la superficie de las rocas pueden indicar su presencia en grandes cantidades. Después de colocar éstos sustratos, se ponen en bolsas de plástico o en recipientes con agua del medio y, sin molestarlos, se espera unos minutos para comprobar su existencia. Al cabo de ese tiempo, comenzarán a contraerse y distenderse; esto se puede ver con facilidad a contraluz y con una lupa. Los especímenes deben conservarse con su sustrato en recipientes que estén a la sombra y trasladarse al laboratorio.

Para desprender la hidras del sustrato, se le sopla con una pipeta de  boca ancha provista de un bulbo de goma y luego se capturan con ella, etc. Esto debe hacerse con rapidez para evitar que se adhieran a la pipeta. Se pueden dejar en agua de su propio medio y se desprenderán cuando el oxígeno se vaya agotando.

Antes de fijar las hidras, se recomienda anestesiarlas, hasta que estén completamente bien extendidas e insensibles. Después se pueden fijar. Para anestesiarlas se puede usar painodol o nicotina, o bien, las solución de Gray, muy útil para hidras, cuyos componentes son: metanol 48g, hidrato de cloral 52g.

Otro procedimiento, según Knudsen (1966) consiste en matarlas rápidamente cuando están expandidas, de la siguiente manera:

1.     Transfiera las hidras a una caja de Petri, o a un vidrio de reloj, con el agua apenas indispensable para que puedan extenderse.

2.     Una vez extendidas, agregue sobre ellas Bouin caliente (50º C).

3.     Transfiéralas al fijador puro durante 30 minutos.

4.     Lave en varios cambios de alcohol de 30%.

5.     Pase los especímenes durante unos minutos a alcohol de 50%.

6.     Preserve en alcohol de 70% por tiempo indefinido.

Para elaborar preparaciones teñidas de hidras enteras, el siguiente método da buenos resultados:

1.     Remueva la hidra con un gotero y colóquela en un vidrio de reloj con un poco de agua de su medio de cultivo. Caliéntela ligeramente. Tenga listo Bouin bien caliente; cuando la hidra se extienda, agréguelo con un gotero por la región aboral, para que así los tentáculos queden totalmente extendidos. Cuando haya confirmado que la hidra está muerta llene el recipiente con fijador.

2.     Después de 10 minutos, lave.

3.     Cuando haya desaparecido bien el fijador, tiña con cualquiera de los siguientes colorantes: carmín, hematoxilina, hemalum, etc.

4.     Puede montar sin deshidratar, en glicerina, o bien deshidratar y montar en bálsamo.

Nota: Para matarlas con rapidez, puede agregar una gota de ácido crómico.

•         Observación de Nematocistos

Éstas células de defensa pueden observarse a partir de hidras vivas, poniéndolas sobre un porta objetos y cubriéndolas con una solución de ácido nítrico al 1% mezclado con azul de metileno diluido.

Para la observación de nematocistos a partir de preparaciones fijas, siga las siguientes técnicas:

1.     Fije la hidra durante 10 minutos en una solución saturada de bicloruro de mercurio en alcohol de 70%. Ésta solución debe agregarse caliente.

2.     Lave el alcohol de 70%.

3.     Tiña con una solución de azul de metileno poco diluida.

4.     Deshidrate.

5.     Aclare con aceite de cedro (dos cambios).

6.     Monte en bálsamo.

•          Hidroides coloniales y otros Celenterados

Al igual que las hidras, es conveniente dejar que los pólipos se expandan para fijarlos en seguida, se pueden anestesiar con sales de sulfato de magnesio que se agregan periódicamente al agua del medio durante varias horas. Cuando queden insensibles se fijan en formol al 5%, en Bouin o en alcohol de 70%.

Utilice el colorante carmín-borax para preparaciones permanentes.

Las formas frágiles como las medusas, conviene capturarlas directamente con un bote o cubeta o con una red para no romperle los tentáculos. Se pueden fijar directamente agregando formol al agua de mar hasta hacer una solución al 5%, y se guardan o se cambian a alcohol de 70%.

Las anémonas de mar pueden colectarse con un cuchillo, arrancándolas directamente de las rocas, donde se adhiere. Los ejemplares de aguas profundas se obtienen mediante el buceo o usando una draga. Éstos animales de ben tenerse en agua de mar y a la sombra y no juntarlo con otros organismos. Para fijarlas se deben expandir previamente, narcotizándolas con aceite de clavo o cloretona. Una vez que el ejemplar quede insensible, se agrega formol hasta hacer una solución al 5%.