Mamíferos

Los mamíferos silvestres no se pueden observar tan fácil como las aves ya que la mayor parte de sus actividades se desarrollan en horarios nocturnos. Observarlos, por lo tanto, es tan difícil como organizar su captura.

El estudio faunístico de un lugar, de la población de una especie o de un grupo de mamíferos y aun en parte de su ecología, necesita especímenes capturados (muertos) mediante procedimientos que les causen el menor daño posible, sobre todo a las pieles y al cráneo.

Para estudios ecológicos detallados, como el seguimiento de las migraciones, es necesario capturarlos vivos.

Trampa ratonera

CAPTURA:

Existen muchos procedimientos, los más elementales son:

-Roedores:

Utilización de trampas ratoneras domésticas. El área de colecta se selecciona según la experiencia y los fines. Los especímenes colectados se colocan en bolsitas de plástico individuales. Se pueden preparar o se guardan de inmediato en un lugar frío, como un congelador.

-Murciélagos:

Se pueden capturar con armas de fuego como pistolas o rifles con un calibre muy fino, sin embargo, es más común y efectivo el uso de redes ya que los mantiene vivos y no daña al ejemplar. Cuando los murciélagos atrapados por las redes ofrecen mucha resistencia a ser desenredados, lo más práctico es colocarles un algodón con cloroformo hasta que se duerman. Las redes se colocan a primeras horas de la tarde obstruyendo el o los orificios de entrada de las cuevas donde los murciélagos se refugian. Al atardecer o anochecer los murciélagos saldrán en busca de alimentos y quedarán atrapados en grandes cantidades.
El transporte de los ejemplares muertos se facilita utilizando cajas aislantes con hielo seco, esto con el fin de prevenir la pronta descomposición.

NOTAS DE CAMPO, OBSERVACIONES Y MEDIDAS DE LOS ESPECÍMENES:

Las anotaciones se escriben con tinta china
 en un diario y un catálogo de campo

Después de haber capturado a los mamíferos, se anotan todos los datos y registro del lugar de colecta y del
espécimen misma ya que si un ejemplar no lleva sus datos este carecerá de validez científica.
Se debe anotar toda la información acerca de la colecta, las observaciones ecológicas del lugar, datos del tiempo, altura o profundidad sobre el nivel del mar, etc. Cada espécimen debe registrarse en un catálogo con un número, seguido del nombre específico, sexo, edad, medidas y peso, así como las condiciones de muda y de los órganos reproductores, el contenido estomacal, parásitos, etc. La fecha y localidad deben ser exactas.

Medidas de los especímenes:
Antes de preparar la piel, se pesa y se mide el espécimen. Las medidas "de campo" que se deben obtener son:

A. longitud total; B. cola vertebral; C. oreja; D. pata trasera.

a) La longitud total: desde la punta del hocico hasta la punta de la cola (excluyendo los delos terminantes de esta).
b) La longitud de la cola vertebral: del extremo posterior del cuerpo hasta la última vértebra caudal. Se obtiene doblando la cola hacia arriba en un ángulo recto con relación al cuerpo.
c) Longitud de la pata trasera: desde el talón hasta la punta de la uña del dedo más largo, manteniendo recta y plana la región plantar.
d) Longitud de la oreja: desde la escotadura o hendidura más profunda situada en la base de la oreja  hasta la punta de la misma.


Rotulado:
Preparado el espécimen se le ata un rótulo en la pata derecha datos como:
El nombre de la institución, museo o persona a la que le pertenece el espécimen, debajo el nombre científico de la especie y en seguida el signo con el símbolo respectivo, la localidad exacta, fecha y nombre del colector, el número del catálogo del espécimen, condiciones sexuales, medidas (siempre en mm) y el peso (en gramos) y las descripciones ecológicas del lugar de captura. También se puede colocar un rótulo pequeño sobre el cráneo con el número de catálogo para identificarlo más rápido.

MONTAJE Y CONSERVACIÓN:

Equipo:
El equipo para preparar las pieles de los pequeños mamíferos es casi el mismo que se utiliza para las aves, agregando solamente un rollo de alambre inoxidable de 1/6 de pulgada, una caja con arsénico y alumbre mezclados a partes iguales (estos e aplica en las pieles internamente para su mejor conservación) y un cepillo pequeño para limpiar a los ejemplares al terminar el proceso.

Desollamiento:
Es muy semejante a la preparación de pieles de aves.

1. Se hace una incisión media en la piel del abdomen, desde cerca del esternón hasta cerca de los órganos genitourinarios.
2. Separar la piel a lo largo de la incisión con unas pinzas hasta que uno de los lados deje al descubierto

   

   Cuchillos para desollar

   una de las piernas.
3. Cortar con tijeras la articulación tibiofemoral (rodilla) de modo que la pierna quede en el cuerpo y el resto suspendido en la piel.
4. Suavemente sacar la porción de pata que ha quedado en la piel , separar con cuidado la piel que se adhiera a la pata , desprender y cortar los músculos que cubren los huesos hasta llegar a la articulación del pie (tibio-tarsal). La tibia puede dejarse o cortarse ya que un alambre sustituirá la consistencia de la pierna. Los huesos tarsales no necesitan limpiarse en los mamíferos pequeños.
5. Regresar la pata y la piel de la pierna a su posición original y proceder igual con la otra pierna.
6. Una vez limpiadas la pernas, continuar desprendiendo la piel por debajo y detrás de éstas hasta llegar a la cola. En esta región la piel se adhiera ventralmente al ano y a los órganos genitourinarios. Costar con cuidado por debajo de la piel.
7. Separada toda la piel de las caderas, dejar al descubierto la base ventral de la cola. Sujetar con unas pinzas en la mano derecha la base desnuda de la cola y jale con la otra mano tratando de sacar la cola

   

   La harina de maíz se usa para evitar que la grasa, sangre y
   piel se peguen a los dedos y para facilitar el
   desprendimiento de esta última.

   vertebral de un solo tirón pero con cuidado.
8. Seguir desprendiendo la piel del torso y luego alrededor del cuerpo e ir doblándola hasta que asomen los codos de las patas anteriores y puedan verse los hombros, se procede igual que con los miembros posteriores.
9. Al llegar a las orejas corte en ambos lados el cartílago que se adhiere al cráneo. En los ojos cortar usando el bisturí lo más pegado posible al cráneo. Seguir desprendiendo la piel hacia delante, es necesario desprender toda la piel de la cabeza.
10. En el hocico, junto a la boca y cerca de los dientes, la piel se une con numerosas fibras nerviosas que deberse cortarse pegando la navaja a los huesos. El cartílago de la nariz también se corta, finalizando así el desollado del ejemplar.
11. Desprender el exceso de grasa y carne de la piel, espolvorearla con la mezcla de alumbre-arsénico o bien con bórax y llenarla con algodón

    

    Animal disecado.

    de fibra larga.
12. Antes de voltear la piel de la cabeza es preferible cerras el hocico mediante dos puntadas de un hilo fuerte y bien amarrado. Enrollar un pedazo de algodón de aproximadamente el tamaño del cuerpo. Comprimir con unas pinzas uno de los extremos hasta que se forme una proyección compacta que ocupará la punta del hocico. Insertar el cuerpo de algodón con las pinzas manteniéndolo firme dentro de la cabeza y acomodar el resto formando el cuerpo del animal.
13. Se se dejó los huesos de las extremidades, enrolle en estos un pedazo de algodón hasta darles el grosor original de las patas y vuelva estas a su lugar.
14. En la cola se introduce otro alambre envuelto uniformemente con una delgada capa de algodón para que esta se mantenga recta junto con el cuerpo.
15. Cepillar el pelo del espécimen, colocarlo ventralmente sobre una tabla de madera blando, corcho, etc. Amarrar a la pata derecha el rótulo correspondiente y fijar el espécimen mediante alfileres. Esto debe, junto con el cráneo ya limpio, guardarse y mantenerse en una atmósfera de paradiclorobenceno que evita que los insectos la destruyan.

Cráneo:

A, B y C, piel de roedor  para colección científica, cráneo
del mismo y sus rótulos; D. piel de murciélago.

El cráneo se desprende del cuerpo y se rotula con el número del catálogo.  Para ello se insertan los hilos del rótulo abrazando una de las ramas mandibulares.

Se puede limpiar con larvas de derméstidos pero si no se dispone de ellas entonces el cráneo se remoja y se hierve brevemente para ablandar la carne adherida a él y después se limpian cuidadosamente los huesos con pinzas y bisturí.

La masa encefálica puede sacarse con chorros de agua dentro de la cavidad craneal aplicados con una jeringa de veterinario de 20cc. después de haber remojado el cráneo durante unas doce horas.

Los cráneos y otros huesos también se pueden limpiar hirviéndolos con agua que contenga 10% de potasa o sosa. Cuando la carne se haya ablandado, se saca el cráneo y se descarna cuidadosamente, en seguida le cráneo con su rótulo se deja en una solución de agua oxigenada y expuesta al sol para que los huesos se blanqueen.

Otras técnicas:

La mayor parte de los mamíferos de tamaño medio (los conejos, por ejemplo) no se rellenan con algodón, sino que la piel se extiende sobre un pedazo de cartón que se recorta del ancho del cuerpo y se da la forma aproximada de la cabeza.

Conservación en líquidos:

Los mamíferos destinados a estudios anatómico o histológicos se fijan con una solución de formol al 10%. 

Se inyecta la cavidad del cuerpo y las zonas musculares, se lavan los especímenes con agua y detergente para quitar la grasa del cuerpo. De esta manera la penetración del formol será más rápida. Se incluyen y se guardan los especímenes en frascos con formol al 10%, el líquido de Keiler modificado también usarse como preservativo.

TRANSPARENTADO DE ESPECÍMENES GRANDES:

Técnica de Dawson:

Es excelente para la demostración de huesos en los embriones o animales pequeños y depende del aclaramiento de los tejidos blandos en potasa (KOH), la tinción del hueso con rojo de alizarina y el remplazo de los fluidos corporales por glicerina.



Mas información acerca de los mamíferos de clic aqui

Insectos

Se los puede encontrar en casi cualquier tipo de ambiente y gracias a su modos de alimentarse, reproducirse y a sus patrones de comportamiento, pueden vivir en diversos tipos de ambiente, incluyendo sobre y dentro de las plantas y animales, también se los puede encontrar en un ambiente acuático, principalmente en su estado larvario aunque algunas especies se desarrollan en el agua en su estado adulto.

-Colecta

Existen muchos métodos de colecta debido a la gran variedad de especies de insectos existentes, los más generales son:

•Redes:

Son principalmente para insectos voladores aunque también son utilizadas para aquellos que se encuentran en hierbas o matorrales o sistemas acuáticos.

Generalmente constante de un saco alargado que es más angosto es su extremo cerrado hecho muselina, manta, tul, etc. según el uso que se les quiera dar. Al saco se le introduce un aro metálico unido a un mango de madera resistente y ligera.

Para los insectos voladores específicamente la red debe poseer mangos largos y aros de 30 a 40cm de diámetro y la tela del saco puede ser de marquesina, tul o nylon. El saco debe estar firmemente unido al aro, el fondo del saco debe ser redondeado y no puntiagudo para evitar daño a los insectos y deberá tener una profundidad de por lo menos  1 ó 2 veces el diámetro del aro.

Las redes de arrastre se utilizan para capturar insectos entre hierbas y matorrales, pasándolas o arrastrándola por ellas, por ello deben ser más fuertes y de mangos más cortos que las redes para capturar al vuelo;  las redes de arrastre acuáticas deben permitir un drenaje rápido del agua, la longitud del mango dependerá del tipo y lugar de la colecta.

Las redes para corrientes de agua se construyen con un trozo de tela de mosquitero unida por dos de sus lados a dos mangos. Se requiere de dos personas, uno que sostenga la red y otro que espante los insectos, haciéndolos nadar hacia la red.

Las redes de golpeo o de sombrilla se utilizan para insectos que se encuentran en lugares difíciles de alcanzar, como ramas y hojas de los arbustos o arboles. La mejor manera de atraparlos es hacerlos caer, para poder recogerlos con la red o una sombrilla especialmente diseñada.

•Utensilios para la colecta:

Las pinzas son un buen utensilio, deben ser lisas y resultan muy útiles para levantar insectos de mayor tamaño, si son muy pequeños se recomienda usar pinceles o aspiradores.

Aspirador

Los aspiradores constan de un tubo de vidrio delgado y en uno de sus extremos cuenta con un tubo de goma de 40 a 60cm y entre ambos existe una malla de gasa como filtro para evitar que el recolector se trague al insecto. El extremo libre del tubo de cristal se coloca cerca del insecto y se succiona por el tubo de goma, atrapando al insecto.

Embudo de Berlese

Otro utensilio es el embudo de Berlese que separa a los insectos de la hojarasca utilizando mallas de alambre, se coloca un foco en la parte de arriba, lo que produce calor y provoca que los insectos vayan al fondo del embudo y queden atrapados en el frasco de colecta. 

Los frascos de colecta utilizan diferentes venenos, los más adecuados son los que matan rápidamente a los insectos sin causar grandes alteraciones los cuales son extremadamente peligrosos para el hombre por lo que deben ser utilizados con extremo cuidado

Trampa de luz

•Trampas de luz: Se basan en el fototropismo positivo de un gran número de insectos. Consta de una sábana que refleja la luz proveniente de una lámpara, atrayendo así múltiples insectos nocturnos. 

Preservación

Se les puede preservar por varios métodos, como lo son:

En líquido:

Alcohol.- Se utiliza para preservar y sacrificar insectos que serán sometidos a análisis moleculares.

Preparaciones permanentes.

Preparaciones semipermanentes.- Se usa comúnmente cuando se requiere visualizar sólo un parte en específico del insecto, utilizando lugol o gelatina glicerinada.

Preparaciones temporales.- Para este tipo de preservaciones se diseca sólo una parte del insecto y saturarla con glicerina.

En seco:

Preservación temporal.- No es un método común ya que no facilita la observación del insecto, sin embargo puede durar por meses o años, se lleva a cabo, colocando al insecto en una bolsa o sobre papel, se recomienda el uso de aserrín o acetato de etilo que mantiene blandos a los insectos y libres de parásitos.

Montaje.- El método directo es el más utilizado en la observación de insectos y se lleva a cabo a travesando al insecto con un alfiler en el tórax para insectos de cuerpo delgado, el alfiler debe quedar en posición vertical al centro del tórax y salir por el vientre entre el tercer y segundo par de patas, pero para el caso de los insectos con cuerpo ancho, el alfiler debe quedar a la misma altura pero del lado derecho del insecto. Cuando el insecto es demasiado pequeño como para ser atravesado por los alfileres, se pega a un pequeño cartón y una punta fina de éste se colocará a la misma altura que en un montaje directo permitiendo visualizar la mayor parte de las estructuras del insecto.

El ablandamiento de los ejemplares secos se lleva a cabo para evitar que se quiebre el ejemplar y no se pueda llevar a cabo un montaje adecuado, se lleva a cabo en una cámara húmeda, que puede serr realizada con un pequeño recipiente que en el fondo cuente con piedras para pecera, algodón, papel absorbente o arena , mezclado con cristales de fenol, se saturará esta mezcla con agua de la llave y se cubrirá con una malla de plástico para evitar que los insectos estén en contacto con el sustrato y se cierra con firmeza evitando que la humedad escape. Todo esto se lleva a cabo para hidratar al insecto y ablandar los órganos , los cristales para evitar la proliferación de hongos, la base es para retener el agua. Otros métodos de ablandamiento son el poner al insecto unos minutos en agua caliente o al contacto del vapor de agua, incluso se le pueden agregar fluidos de relajación como el de Barber .
A continuación se muestra un video donde se muestra como realizar un montaje:

¿Sabes como es la vida de insecto? estas a un  clic de saberlo

Arácnidos

En su mayoría terrestres, son animales quelicerados con cuatro pares de patas caminadoras, abundantes y fáciles de localizar. Muchos hacen sus nidos dentro de hoyos.

COLECTA:

Gran número de ellos tienen hábitos nocturnos y hábitat y hábitos alimenticios muy variados. Se pueden encontrar en el suelo, paredes rocosas o grietas, en ramas de la vegetación, bajo la hojarasca, bajo las piedras, etc.

En la captura de arácnidos se debe llevar una buena dotación de alcohol de 70% en varios frascos de boca ancha y de diversos tamaños. 

Después de ser capturados se pueden matar directamente en alcohol. Cada especie se debe guardar en un frasco por separado y numerado, jamás se deben colocar dos arañas o más juntas pues ésto podría tener como consecuencia peleas y pérdida de apéndices o la destrucción de alguno de los ejemplares. Así mismo se deben hacer anotaciones sobre las observaciones de la especie (color, alimentos, hábitos, etc.) y del lugar de colecta.

El método y equipo para la captura de arácnidos varía según la especie de la que se trate y pueden ser pinzas largas o de tamaño medio. 

Las arañas son frecuentes en los campos abiertos y entre las ramas, se pueden capturar con una red de arrastre. Algunos arácnidos  muy pequeños como ácaros, garrapatas o pseudoescorpiones se pueden capturar con pincel pequeños y fijar directamente en alcohol.

-ESCORPIONIDOS (ALACRANES):

En su gran mayoría se encuentran en lugares áridos y semiáridos. Ciertas especies son muy venenosas mientras que otras de gran tamaño son poco tóxicas. Los alacranes se deben tomar por la cola para evitar que esta se mueva. Durante el día se refugian en el fondo de pequeños agujeros; en los meses húmedos fácilmente se les encuentra bajo las piedras y, en ocasiones sobre estas, por eso se debe tener precaución al levantar las piedras con las manos.

-UROPÍGIDOS (VINAGRILLOS):

Habitan lugares semihúmedos, bajo troncos podridos o bajo piedras. Como su abdomen es grande se recomienda inyectar el fijador en este lugar después de muertos para asegurar una fijación completa.

OPILIÓNIDOS (ARAÑAS PATONAS DE CUERPO PEQUEÑO):

En ocasiones se les encuentra en los techos de las habitaciones, son muy comunes en lugares cálido-húmedos. Aquí deben buscarse en los huecos de los árboles, bajos los troncos podridos o bajo la hojarasca.

SOLPUGIDOS O SOLÍFUGOS:

Son arácnidos de unos cuatro centímetros de longitud, de color amarillento o anaranjado y con los quelíceros (par de apéndices más anterior de los artrópodos quelicerados) enormemente desarrollados. Se les encuentra con frecuencia bajo las piedras de los lugares calizos semiáridos.

-PSEUDOESCORPIÓNIDOS:

Incluidos en los arácnidos pequeños, miden alrededor de 1 ó 2 mm y tienen aspecto de un alacrán pero sin cola o metasoma. Viven en lugares húmedos entre piedras o maderas podridas. Se confunden fácilmente con pequeñas arañitas. Se deben recolectar con un pincel pequeño  y guardarse en frascos pequeñitos con todos sus datos.

-ÁCAROS:

Se pueden encontrar también entre los zacates u hojas de los campos, bosques o en lugares fríos. Otros ácaros son comunes en el cuerpo de alacranes (se ven como puntos rojizos). Se pueden colectar con un pincel y se depositan en frascos pequeños,

-GARRAPATAS: 

Suelen encontrarse en pastos y hierbas frecuentados por el ganado pero es más fácil obtenerlas de sus huéspedes. Además de encontrarse sobre el ganado, se localizan frecuentemente en los reptiles y aveces sobre las aves. También abundan en los roedores y murciélagos.

CONSERVACIÓN:

Casi cualquier arácnido se puede conservar en alcohol de 70% ó de 80% y también en formol al 5%. Sólo cuando los especímenes se vayan a utilizar para disecciones detalladas o cortes microscópicos, se recomienda fijarlos en F.A.A.

PREPARACIONES PERMANENTES DE GARRAPATAS Y ÁCAROS:

A las garrapatas o ácaros que no tengan sangre en el intestino se les mata con agua hirviente, se ponen en alcohol absoluto (con dos a tres cambios en 24hrs) y finalmente se les monta en bálsamo de Canadá.

Las garrapatas que tengan sangre se matan con cloroformo, se pasan por diversos alcoholes (de 50°, 70° y 96°) durante 5mins cada uno, se transfieren a alcohol absoluto  y se montan en bálsamo de Canadá.

Proyectos con arácnidos

Platelmintos

Son gusanos aplanados dorsoventralmente, representados en su mayoría por especies parásitas de diversos animales. Aunque parte de ellos son de vida libre. Se clasifican en tres tipos: turbelarios, trematodos y cestodos.

TURBELARIOS

COLECTA:

Son de vida acuática y se los encuentra en aguas dulces, para poderlos colectar se debe buscar en lugares con poca luz (bajo piedras o raíces de plantas acuáticas). Los métodos para su captura son:

·         Levantar piedras lentamente

·         Colectar plantas acuáticas y revisarlas con cuidado

·         Se puede lograr que salgan de la vegetación acuática depositándola en recipientes con agua del medio. A medida que el oxígeno se vaya agotando, los gusanos saldrán y se podrán ver en las paredes del recipiente.

·         Algunos platelmintos, como las planarias pueden capturarse dejando sebos en el agua, como pedazos de carne cruda

·         Se deben colectar con el filo de un cuchillo, no con pinzas porque se les puede aplastar

Otros turbelarios pueden encontrarse en tierra en lugares muy húmedos y sombreados, hay muchas especies en la vegetación húmeda de las selvas tropicales.

En México, algunas especies viven en la piedras o en los ladrillos, guardadas en lugares con sombra y húmedos. En el campo pueden buscarse sobre piedras cubiertas de musgo que son siempre húmedas.

Una buena técnica para colectarlos en selvas o bosques húmedos consiste en buscar troncos podridos que se encuentran sobre el suelo y descortezarlos poco a poco, para buscar platelmintos que se refugian normalmente en estas cortezas.

CONSERVACIÓN:

Cuando los especímenes no se van a usar para preparaciones definitivas se deben conservar en formol al 2% ó al 5%. También se pueden conservar en alcohol al 70%, es recomendable fijar los especímenes cuando estén bien extendidos. Para lograr que se extiendan se deben poner en un vidrio de reloj o caja Petri con agua del medio, después se le añade el fijador caliente (50-60°C) y luego se transfieren al fijador puro.

Si los especímenes serán usados para preparaciones definitivas,  se sigue el mismo método con fijadores específicos (F.A.A o bien, el fijador GILSON) y los especímenes se guardan en alcohol al 70% haciéndolos pasar antes por alcoholes más débiles.

Para fijar los especímenes más grandes es mejor narcotizarlos, esto se logra poniendo a los especímenes en un disco de Siracusa con agua de su medio y agregando cristales de cloretona o mentol por más de cuatro horas. Cuando queden insensibles se ponen entre dos portaobjetos amarrados con una liga y se le agrega el fijador por un lado.

Numerosas especies se pueden cultivar de manera más o menos sencilla debido a su vida libre.

TREMATODOS

COLECTA:

La mayoría son platelmintos parásitos en diversos órganos en vertebrados tienen ciclos con fases larvarias y con huéspedes intermediarios. Viven en las granjas y debajo de las escamas de los peces, en las cavidades nasales, hígado, pulmones, vejiga urinaria, etc., pero más comúnmente en el tubo digestivo de cualquier vertebrado.

Para colectarlo se recomienda colocar al posible huésped en una charola (recubierta de parafina) para disección y ahí revisarlo bajo el microscopio estereoscópico o hacer la disección del organismo.

La revisión de los órganos del posible huésped puede hacerse sumergiéndolos o bañándolos periódicamente

en suero fisiológico. Se corta el tubo digestivo en secciones para revisar parte por parte. Extraiga los parásitos bajo el microscopio con un pincel fino, pipeta, aguja para disección o pinzas pequeñas y trasládelos a una caja Petri con suero fisiológico. Se recomienda no mezclar los parásitos de un órgano con los de otro o de secciones diferentes, para poder estudiarlos de manera exacta.

Los peces pueden tener ectoparásitos bajo las escamas. Para colectarlos existen 2 técnicas:

·         Buscar nódulos sobre la superficie del pez y abrirlos, es probable que contengan parásitos adultos o larvas.

·     Separar las branquias y sumergirlas en agua de mar o en suero fisiológico, buscar los parásitos observando este material al microscopio. Tanto los trematodos y los cestodos son difíciles de cultivar, aunque se ha logrado mediante cultivos sintéticos y huéspedes intermediarios.

FIJACIÓN:

Una vez obtenidos los parásitos y separándolos en cajas Petri con suero fisiológico limpio, se fijan entre dos portaobjetos colocándolos en Bouin o F.A.A. y sublimado acético.

TINCIÓN:

Se pueden teñir con hematoxilina o carmín. Se lavan, se deshidratan y se dejan en creosota durante 24hrs o más y se montan en bálsamo.

Para teñir los parásitos de peces se pueden usar los siguiente colorantes:

       1.       Pracarmín de Maeyer

       2.       Hematoxilina de Delafield

     3.       Colorante acuoso de Horen (éste da mejor resultado para colorear los parásitos de peces en solución acuosa diluida)

La mayoría de los parásitos después de deshidratados se aclaran en aceite de clavo y por último se montan en bálsamo de Canadá.

 CESTODOS

COLECTA:

Son gusanos endoparásitos con aspecto de listón, segmentados, conocidos comúnmente como tenias o solitarias; se encuentran en el tubo digestivo de vertebrados terrestres y de algunos

peces cartilaginosos.

Para extraerlos, se diseca a los huéspedes. Se sumergen en una solución salina los intestinos grueso y delgado y se buscan los cestodos. Si se localizna las cintas, se busca con cuidado el escólex, siguiendo bajo el microscopio, el extremo más delgado y se transfiere a una caja petri con una solución salina limpia. El cuerpo se pone en otra caja. Las planarias pueden mantenerse, por lo general, en acuarios con vegetación adecuada.

FIJACIÓN:

Se colocan entre dos portaobjetos y se fijan con F.A.A., Bouin o formol al 5% ó alcohol caliente al 70%.  El escólex deberá ir con algunos segmentos y puede teñirse con carmín-bórax.

Se deben lavar los cestodos antes de fijarlos y después tratarlos con ácido crómico al 1% y después se fijan con una solución preparada de F.A.A.

Una vez fijados se transfieren durante 24hrs a alcohol de 50% y se hacen (varios cambios). Finalmente se almacena en una solución de formol-alcohol. Para las planarias existe una técnica específica: la de Chao Fa Wu. Esta consiste en  colocar a la planaria en un portaobjetos con una gota de agua del medio y cubrirla con otro portaobjetos más largo. Por capilaridad se le coloca ácido crómico al 1% y extraer el exceso de agua con un papel filtro. Pasados unos minutos se sumerge la preparación, sin quitarle el portaobjetos, dentro del fijador y pasadas 24 horas (según el fijador empleado), se pueden conservar por tiempo indefinido en alcohol de 70% o formol al 5%

Tinción de planarias: Primero se deben lavar perfectamente y dejarse blanquear en vapores de cloro o en peróxido de hidrógeno para poder observar los órganos internos.  Se tiñen con colorantes básicos como la hematoxilina. Algunas técnicas para su tinción son la técnica de Guyer para planarias o la técnica con carmín-bórax.

Aves

La mayor parte de aves habitan en nidos, por lo cual es fácil estudiar su comportamiento generalizado para las diversas  especies.

Colecta.

En ocasiones es necesario capturar vivas las aves, para observar su estado sexual, mudas de plumaje o marcarlas, seguir sus rutas migratorias y dejándolas en libertad momentos después de su captura. Otras veces se capturan muertas para seguir características de desarrollo interno, para recuperar especímenes marcados, algún estudio comparativo    o estadístico y formar ejemplares preparados.

Redes

El método de captura en vivo se basa en utilizar finas redes, fabricadas con hilo de seda o plástico. Las dimensiones de red varían mucho, con frecuencia se utilizan las mismas redes para pájaros pequeños, medianos y murciélagos. Por lo común de 8 a 12 metros de longitud por 2 metros de ancho.

Los charcos y otras fuentes de agua son excelentes lugares de colecta así como las veredas o las orillas de sembradíos. Seleccionada el área de colecta se abre una brecha de 2 mts. de ancho y un poco más larga de la longitud de la red. Las aves que pasan por esos lugares no percibirán los finos hilos de la malla y al atravesar quedaran atrapados en ella.

El impacto del ave sobre la red, hace que esta forme una bolsa que se cuelgue al lado opuesto por donde llego. Al desenredar totalmente el ave de la red está lista para depositarla dentro de una bolsa de trapo para ser transportada al campamento o lugar de estudio, al llegar a este de inmediato  meterla en una jaula para evitar que se sofoque. Algunas aves se esfuerzan tanto por escapar de la red que se lastiman la lengua si es necesario anestesie al animal antes de sacarlo.

Marcado.

Una de las finalidades de colectar aves vivas es poder marcarlas o anillarlas para seguir sus movimientos o rutas después de dejarlas en libertad. Al capturar se debe identificar y anotar los datos que se pueden obtener de su observación: sexo, edad, muda estado sexual etcétera.

Cuando se quiere seguir sus movimientos dentro de un área limitada, es suficiente pintarle las plumas por medio de  colorantes insolubles.

Radiotransmisores.

En algunas palomas mensajeras se han colocado radiotransmisores para averiguar su localización exacta

.

Bandas o anillos.

Existen dos tipos de anillos para marcar aves. Anillos de plástico de colores y de aluminio estas últimas son bandas de circulares que no se cierran completamente  y pueden abrirse con relativa  facilidad.

Los primeros se utilizan para estudiar en ares reducidas pueden colocarse en la pata (tarso-metatarso). Los anillos de aluminio se utilizan para estudiar las migraciones. Por lo cual son de material más resistente y de producción y distribución controlada por instituciones de carácter nacional las cuales llevan un registro de los números que se escriben en cada anillo junto con las iniciales de la institución y la dirección. Para colocar un anillo de aluminio se debe abrir con pinzas de electricista de punta y colocarse alrededor de la pata. Hecho esto se cierra el anillo con las pinzas teniendo cuidado de no maltratar al animal anotando los datos necesarios  y se deja en libertad.

Colecta con munición o postas.

La captura de aves con rifle o una escopeta, adaptados para mostacilla. Tienen un alcance de 15 a 30 metros. Y quedan en magníficas condiciones para ser preparadas como especímenes de estudio.

Montaje o “preparación” de los especímenes.

La taxidermia tradicional es diferente a la de “preparar” los especímenes  de estudio científico, cuya finalidad es mostrar las distintas áreas del cuerpo y del plumaje.

Las pieles de las aves se preparan dándole un aspecto alargado como de cilindro. Algunos investigadores prefieren conservar en alcohol, a los especímenes pequeños ya que presentan ciertas dificultades para su preparación en piel como en el caso de los colibríes o chuparrosas.

Fijación  y  conservación en líquidos.

Antes de fijar y de incluir al animal en la solución de formol debe lavarse por fuerza con jabón neutro. Una vez lavados y enjuagados el fijador penetrara más fácilmente.

Los especímenes destinados para estudio anatómicos deben fijarse con una solución de formol al 10% inyectándolos en la cavidad del cuerpo. Posteriormente  a 24 o 48 horas se lava por lo menos durante 12 horas con agua corriente para librarlo del exceso de formol y posterior a esto se coloca en una solución de alcohol de 70% el cual se puede conservar indefinidamente. 

Diversidad de aves 

Equinodermos

Son animales marinos cuyas formas de simetría radial se pueden reconocer con facilidad. La mayoría viven en zonas rocosas poco profundas.

Colecta de equinodermos.

Puede ser manual, para ello es indispensable un cuchillo y bolsas. Viven por lo común sobre las rocas o piedras sumergidas, entre las grietas o hendiduras de las rocas y sobre los fondos fangosos o arenosos.

Conservación.

Se pueden conservar secos o en líquidos.                                

 Si se conservan líquidos es recomendable anestesiarlos previamente, para ello se colocan en agua de mar que apenas lo cubra, agregando un poco de sulfato de magnesio, también se puede utilizar cloruro de magnesio, agregando gota a gota alcohol del 70%. Una vez insensibles se fijan con formol del 5% o con alcohol de 70% inyectándolos en las partes internas del animal. Los equinodermos que vayan a utilizarse para disección deben conservarse en líquidos.                               

                                                                        

Para las conservaciones secas se deben hacer fijado y secado al ambiente caliente evitando los rayos directos del sol. 

Diversidad de equinodermos 

Moluscos

Animales de cuerpo blando no segmentado, poseen una cabeza anterior seguida de un cuerpo que contiene las vísceras y un pie ventral musculoso con el que se desplazan. En casi todo su cuerpo está protegido por una concha externa.    

Colecta de moluscos.

En el ambiente marino se encuentran numerosos gasterópodos en la zona de mareas, que pueden colectarse con la mano en las orillas bajas siendo las colectas nocturnas mas productivas. Al colectarlos en zonas rocosas se tiene que buscar en puntas, lados, depresiones y gritas de las rocas.

En las playas más profundas debe tamizarse la arena y el fango donde con frecuencia se entierran.

Los caracoles carnívoros se pueden atraer con cebos diversos tales como pedazos de camarones, jaibas y peces colocados en trampas. 

En agua dulce se pueden colectar en lagos, pantanos y arroyos de corrientes lentas, se encuentran con frecuencia cerca de las orillas del agua, en los fondos fangosos o fijos en las rocas, plantas o ramas sumergidas.

 En el ambiente terrestre pueden encontrarse en los jardines y campos, debido a sus hábitos nocturnos muchos de ellos se colectan fácilmente por las noches.

Para guardar convenientemente las conchas, casi siempre se necesitan sacar los tejidos. Los caracoles se pueden matar en agua hirviendo. 

Fijación.

Es muy importante que los moluscos estén totalmente relajados y extendidos ya que solo así se pueden estudiar y disectar. Para obtener especímenes fijado es necesario anestesiarlos antes de matarlos.

Pueden ponerse en un recipiente con agua del medio natural agregándole gota a gota una solución de 10% de alcohol. Cuando queden completamente insensibles se deben fijar en formol al 10% 

Diversidad de Moluscos en México 

Anélidos.

 Gusanos cilíndricos terrestres o acuáticos, de aguas dulces o marinas, cuyo cuerpo está dividido en numerosos segmentos.

Medios de colecta.

Se colecta en ambiente marino donde vive la mayor cantidad de especies, por lo general poliquetos. Estos gusanos que incluyen el extenso grupo de los tubícolas. Se encuentran debajo de las rocas, adheridos a las algas marinas, objetos flotantes y a muchos moluscos.

Por su amplio rango de formas es necesario tener una colecta que abarque desde la observación de la superficie de las rocas y las algas, sino levantando piedras, hasta dragando de los fondos profundos y el tamizado o colando de las arenas de la playa.

La colecta de los poliquetos arenícolas puede hacerse con un tamiz construido de madera de pino o cedro, haciendo primero un cajón rectangular de 40 a 60 cm de largo y un fondo de 10 cm. Sobre este marco clava apropiadamente un tamiz o una red de alambre inoxidable de unas doce o más mayas por pulgada cuadrada. Se recomienda hacer tamices con mayas cada vez más pequeños para una mejor colecta.

Otra clase de anélidos representativa, no tanto por su cantidad de especies sino por la grandeza de sus poblaciones, es la clase de los oligoquetos, cuyos representantes más representativos son las lombrices de tierra que se extraen mediante una pala, de lugares húmedos y donde las plantas siempre se encuentren verdes. Otro método es el uso de corrientes eléctricas que emplean dos varillas de unos 40 cm enterradas hasta la mitad; Otros oligoquetos que se pueden obtener en abundancia en el fondo fangoso de los charcos de agua dulce, orillas de los lagos, arroyos, etc.

Las sanguijuelas que pertenecen a la clase de anélidos Hirudínea, estos gusanos cuentan con una ventosa en cada extremo de su cuerpo que le permite adherirse a plantas, rocas etc. Se les puede encontrar en los canales anexos del lago de Chapultepec o en Xochimilco.

Un pedazo de hígado puede ser útil al sumergirlo por unos minutos, ocasionalmente se les puede observar como parásitos de sapos, peces o tortugas.

                                          
Narcóticos y fijación.

Las sanguijuelas se pueden fijar con F.A.A o Boutin. Las de menor tamaño pueden ser colocadas entre un porta y un cubre objetos, añadiendo F.A.A o Boutin por un lado del cubreobejtos y secando el exceso con papel filtro por el lado contrario. Luego de 20 a 30 minutos se pueden colocar en F.A.A puro o formol al 5% o alcohol al 70%.

Los poliquetos se pueden fijar en formol al 5% y dejarlos hay o sacarlos y ponerlos en alcohol al 70%. En poliquetos pequeños se pueden hacer preparaciones totales:

1.     Se anestesian.

2.    Se fijan en F.A.A de 8 a 12 horas.

3.    Se lavan en alcohol de 50%, tres cambios de 15 minutos c/u.

4.    Se pasan a alcohol de 70% por varios minutos.

5.    Se tiñen con carmín-búrax durante una hora o más.

6.    Se decoloran con alcohol acidulado al 70%.

7.    Se continúan deshidratándolos hasta el alcohol de 96%.

8.    Se ponen en esencia de cuparal y se montan en cuparal puro. Se pasan a dos cambios de alcohol absoluto, se aclaran en xilot y se montan en bálsamo.